他们发现只有把anti-CD19synNotch→mIL-2(小鼠IL-2)受体与anti-MesothelinCAR受体安装在同一个T细胞上(自分泌IL-2) , 才能够有效清除免疫正常小鼠体内的肿瘤;而把这两个受体分别安装在两个T细胞上(旁分泌IL-2) , 混合注入免疫正常小鼠体内则不能清除肿瘤 。 免疫抑制性黑色素瘤模型具有相似表现 。
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免疫正常小鼠内 , 只有把synNotch受体与CAR受体安装在同一个T细胞上才能清除肿瘤
对于此差异 , WendellA.Lim团队认为 , 由肿瘤抗原条件性激活的局部细胞因子自分泌环路起到了关键作用 。 研究团队通过对比CAR-T细胞联合大剂量全身IL-2、组成性持续表达IL-2的CAR-T细胞、由CAR激活的条件性表达IL-2的CAR-T细胞 , 证实了这一假设 。
具体而言 , 全身应用大剂量IL-2引起强烈的全身毒性;组成性持续表达IL-2引起IL-2的基因沉默 , 可能原因是IL-2的双相作用 , 长时间持续的IL-2作用加速了激活诱导的T细胞终末分化和死亡;由CAR激活的条件性表达IL-2 , 因与CAR共用一个肿瘤抗原信号 , 特异性减低 , 使CAR-T细胞产生严重的针对正常组织的靶向毒性(on-target/off-tumortoxicity) 。 而由两个不同肿瘤抗原信号分别激活synNotch受体和CAR受体则大大提高了肿瘤靶向特异性 , 有效避免了上述其他IL-2递送方法的缺陷 。
所以 , 重要的不仅是给不给细胞因子 , 还包括什么时间给、什么空间给、给的方式、给多少等 , 还得能够实时感应、动态调节 。
最后 , 研究团队研究了带有自分泌synNotch→IL-2环路的CAR-T细胞是如何清除肿瘤的 。
肿瘤切片染色显示 , 带有自分泌IL-2环路的CAR-T细胞广泛浸润整个肿瘤;而普通CAR-T细胞只存在于肿瘤外周 , 无法浸润到免疫排斥型肿瘤内部 。
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带有自分泌synNotch→IL-2环路的CAR-T细胞广泛浸润到免疫抑制性肿瘤内 , 普通CAR-T细胞则不能
流式细胞术显示 , 自分泌IL-2的CAR-T细胞促进CAR-T细胞和小鼠自身T细胞的浸润 , 而旁分泌IL-2的CAR-T细胞(synNotch受体和CAR受体分别安装在两个T细胞上)只促进小鼠自身T细胞的浸润 , 可能的原因是小鼠自身的T细胞相比输注的CAR-T细胞数量庞大 , 竞争性消耗了肿瘤微环境中的IL-2 。
质谱流式功能分析显示 , 只有浸润的自分泌IL-2的CAR-T细胞表现出活化、杀伤效应、增殖活性 , 且无耗竭表现;而浸润的小鼠自身的T细胞在活化、杀伤效应、增殖、耗竭等方面均无改变 , 起到大量消耗IL-2的作用而无抗肿瘤活性 , 并且小鼠自身T细胞相比CAR-T细胞数量庞大且源源不断 , 这可能是旁分泌IL-2被“截胡”的主要原因 。 另外 , 肿瘤微环境中髓系来源的免疫抑制性细胞功能也没有发生变化 。
总体来说 , WendellA.Lim教授领衔的研究团队设计的肿瘤抗原特异性激活的自分泌细胞因子(synNotch→IL-2)环路 , 不是通过改变免疫抑制性微环境 , 而是通过巧妙地绕过免疫抑制性微环境的两个关键步骤(TCR信号通路的失活和IL-2等细胞因子的消耗) , 实现CAR-T细胞对肿瘤的杀伤 , 同时避免IL-2的全身毒性及CAR-T的脱靶效应 。
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肿瘤抗原特异性激活的自分泌细胞因子(IL-2)环路促使CAR-T细胞绕过免疫抑制性微环境的两个关键步骤而有效杀伤肿瘤
有趣的是 , 由波士顿大学生物设计中心的AhmadS.Khalil教授领衔的研究团队 , 也在同期《科学》上发表了可控制的合成性基因环路研究 , 该环路可导入原始T细胞 , 从而有顺序的、有组织的引导T细胞发生增殖、活化 , 产生抗肿瘤活性[8] 。
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